一文帶你學(xué)會(huì )糖原pas染色試劑盒的使用方法
更新時(shí)間：2023-02-18 點(diǎn)擊次數：865次
1、常規固定，常采用10%的福爾馬林，常規脫水包埋。
2、石蠟切片脫蠟入蒸餾水；冰凍切片直接入蒸餾水。
3、再用蒸餾水洗2次。
4、用試劑(A)氧化劑室溫(25-30℃)處理10～20min。
5、自來(lái)水沖洗1次，再用蒸餾水浸洗2次。
6、樣本放入試劑(B)Schiff試劑中，置于室溫(25-30℃)染色10～20min。
7、自來(lái)水沖洗10min(染色較深的切片可縮短時(shí)間)。
8、樣本置于Mayer’s蘇木素染色液中，染細胞核1～2min。
9、酸性分化液分化2～5s(選做)。
10、自來(lái)水沖洗10～15min使細胞核返藍。
11、梯度乙醇脫水,二甲苯透明，中性樹(shù)膠封。
糖原pas染色試劑盒的使用注意事項：
1、切片脫蠟應盡量干凈，否則影響染色效果。
2、氧化劑氧化時(shí)間不宜過(guò)久，氧化時(shí)的溫度以18～22℃最佳。
3、氧化劑和Schiff試劑應置于4℃密閉保存，使用時(shí)避免接觸過(guò)多的陽(yáng)光和空氣。使用前，最好提前30min取出恢復到室溫后再使用，避光暗處使用。
4、酸性分化液應經(jīng)常更換新液，其分化時(shí)間應該依據切片厚薄、組織的類(lèi)別和酸性分化液的新舊而定，另外分化后自來(lái)水沖洗時(shí)間應該足夠。
5、在氧化劑和Schiff試劑中作用時(shí)間非常重要，該依據切片厚薄、組織的類(lèi)別等決定。
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